步琦实验室设备贸易(上海)有限公号/p>
已认?/p>
使用SFC
分离手性反?1,2-二苯乙烯氧化?/strong>
SFC 应用
本应用描述了以反式二苯乙烯氧化物为手性分子的手性柱筛选和连续的制备方法,并用叠层进样方法进行制备分离、/p>
1
简今/strong>
手性分子是一种有机化合物,它具有一种独特的性质,即互为不可重叠的镜像。这意味着它们以两种形式存在,称为对映体,除了原子的三维排列外,它们在各方面都是相同的。虽然这些对映体具有相同的化学性质,但它们可能具有不同的生物活性和药理作用[1,2]、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">因此,手性分子在制药工业中变得越来越重要,它们被用于开发药物和其他治疗方法,因此分离对映体十分重要、/strong>
超临界流体色谱法(SFC)在手性分子的分离纯化中,具有其他分离技术无法比拟的优点、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">SFC 使用超临界二氧化碳作为流动相,这是一种清洁和绿色的溶剂,很容易从最终产品中去除。此外,SFC 提供了高分辨率和快速的分离、/strong>
预测哪种固定相能够有效分 SFC 中特定的一组对映异构体,即使在现在看来也是十分困难,这使得我们需要选择合适的手性固定相来不断试错[2]、/p>
手 SFC 多采用与手性高效液相色?HPLC)相同的色谱柱,其中最常用的是多糖手性固定相(CSPs),由于可以选择不同改性的多糖,因此具有很强的通用性[3]。多 CSPs 具有高负载能力,这使得它们在制备规模应用中非常有用。许多商业多糖手性固定相是可用的,主要是基于直链淀粉或纤维素和改性的卤化或非卤化芳香基团。改性后的多糖可以包被或固定在二氧化硅载体上,以增强其对强溶剂的抵抗力[3]。还有其 CSPs 通常用于手 SFC 应用,例如,Pirkle 型手性固定相[3]、/p>
本文介绍了使 Sepmatix 8x SFC 对反式二苯乙烯氧化物(TSO)进行平行柱筛选,随后通过方法优化转移到制备的 Sepiatec SFC-50、/strong>
▱/span>反式 - 二苯乙烯氧化 两种手性结枃/span>
2
设备
Sepiatec SFC-50
Sepmatix 8x SFC
PrepPure cCDMPC, 5um, 250 x 4.6mm
PrepPure cADMPC, 5um, 250 x 4.6mm
PrepPure iADMPC, 5um, 250 x 4.6mm
PrepPure iCDMPC, 5um, 250 x 4.6mm
PrepPure iCDCPC, 5um, 250 x 4.6mm
PrepPure iBT, 8um, 250 x 4.6mm
PrepPure iBT, 8um, 250 x 10mm
3
试剂和耗材
二氧化碳(99.9%)
甲醇(?9%)
乙醇(99%)
异丙?99%)
乙腈(99%)
反式二苯乙烯氧化?99%)
(为了安全操作,请注意所有相应的MSDS(/span>
4
实验过程
样品制备9/span>
在筛选和方法优化时, 0.075g 反式二苯乙烯氧化物溶解在 5.0mL 甲醇中;在堆叠注射时,将 0.1909g 反式二苯乙烯氧化物溶解于 6.0mL 甲醇中、/p>
使用 Sepmatix 8x SFC 进行筛选:
流动盷/strong> |
A = 二氧化碳;B = 甲醇 |
|
流逞/strong> |
3 mL/min (每根色谱柱(/p> |
|
流动相条仵/strong> |
||
0 - 0.5min |
5% B |
|
0.5 - 8.0min |
5 - 50% B |
|
8.0 - 9.4min |
50% B |
|
9.4 - 9.5min |
50 - 5% B |
|
9.5 - 10min |
5% B |
|
检浊/strong> |
200nm 600nm 紫外扫描 |
筛选完全是全自动运行,采用流量控制单元,将每通道内的流量设置 3mL/min,并将流量平衡。样品自动进样(每根色谱 5μL),启动平行筛选(运行时长=10分钟)。背压调节器设置 150bar,柱温箱设置?2℃、br style="box-sizing: border-box;"/>
使用 Sepiatec SFC-50 进行制备9/strong>
流动盷/strong> |
A = 二氧化碳;B = 甲醇 |
|
流动相条仵/strong> |
等度运行 |
|
检浊/strong> |
229nm 紫外检浊/p> |
PrepPure iBT 色谱柱在设定的流速下预热 4 分钟,样品通过定量环自动进样并运行。背压调节器设置 150bar,柱温箱设置 40℃、/p>
5
实验结果
色谱柱筛选:
为了确定手性化合物 TSO 的最佳分离条件,进行了不同手性色谱柱的筛选,使用 Sepmatix 8x SFC 允许同时进行 8 根不同色谱柱的平行筛选。本实验一共使用了 6 根不同色谱柱:Chiral iADMPC, Chiral iCDMPC, Chiral iCDCPC, Chiral iBT, Chiral cADMPC Chiral cCDMPC、span style="color: rgb(165, 210, 0); text-decoration-line: underline; box-sizing: border-box;">?为色谱柱筛选结果,其中 Chiral iADMPC 色谱柱不能很好地分离对应异构 TSO(可见表1), Chiral iCDMPC,Chiral iCDCPC,Chiral iBT,Chiral cADMPC Chiral cCDMPC 色谱柱可以分 TSO、/p>
▱/span>?. Sepmatix 8x SFC 筛选结果。从左上至右下依次是Chiral iADMPC,Chiral iCDMPC和Chiral iCDCPC;Chiral iBT,Chiral cADMPC Chiral cCDMPC。运行时 =10min,紫外检测波 =229nm
在处理复杂的混合物时,分辨率 R 是一个特别重要的参数,因为它衡量了每一次分离的程度,并且可以被准确识别和量化。例如分辨率 R=1 表明了不理想的分离效果,两个峰本质上并没有分离,更高的分辨率数值代表了更好的分离效果。在实际运行过程中,分辨 R 至少达到 1.5 才会被认为是分离的、span style="text-decoration-line: underline; color: rgb(165, 210, 0); box-sizing: border-box;">?显示了不同色谱柱分离 TSO 时的分辨 R。在转移 SFC-50 制备时,选择 iBT 色谱柱,因为它有最佳的分离效果,最容易实现转移,进样量可大大提高、/p>
?. 使用 Sepmatix 8x SFC 筛选时不同色谱柱的分辨玆/strong>
色谱柰/strong> |
R |
|
iADMPC |
1.23 |
|
iCDMPC |
1.74 |
|
iCDCPC |
4.68 |
|
iBT |
14.47 |
|
cADMPC |
6.20 |
|
cCDMPC |
4.22 |
使用 SFC-50 进行结果优化
为了确定改性剂 TSO 的影响,下列每一种改性剂都在等度条件下使用:PrepPure iBT, 8um, 250 x 10mm 色谱柱;甲醇,乙醇,异丙醇,乙腈 (?span style="text-decoration-line: underline; color: rgb(165, 210, 0); box-sizing: border-box;">?)、/p>
▱/span>?. 左上-甲醇,右?乙醇,左?异丙醇,右下-乙腈。流 =20mL/min,改性剂含量 =25%,温 =40℃,背压调节 =150bar,进样量 =150μL
甲醇(偶极矩参? 5[4])在对映体有足够的峰距的情况下,仅 3 分钟内分 TSO。乙?偶极矩参? 4[4])作为极性稍小的改性剂,分离所需时间略大 3 min。异丙醇(偶极矩参? 2.5[4])在不 3.5 分钟的时间内分离 TSO,这是由于异丙醇的极性较小。乙?偶极矩参? 8[4]) 2.25 分钟内最有效地分 TSO、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">然而,甲醇被用作进一步实验的改性剂,因为它的窄峰宽和对称峰有望带来高进样量。此外,它比乙腈毒性更小,价格也更便宜、/strong>
由于流动相中改性剂的含量会因极性变化而对分离产生影响,所以采用了不同的甲醇含??span style="text-decoration-line: underline; color: rgb(165, 210, 0); box-sizing: border-box;">?)、/p>
▱/span>?. 左上 20% 甲醇,右 25% 甲醇,左 30% 甲醇,右 35% 甲醇。流 = 20mL/min,,温度 =40℃,背压调节 =150bar,进样量 =150μL
流动相甲醇含量由 20% 连续增加 35%,运行时间逐渐缩短。当改性剂含量 35% 时,运行时间可以从大 3.5 分钟缩短至约 2.5 分钟。不过分辨率有所降低,对映体的峰宽也降低了、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">因此,在进一步的实验中,改性剂的浓度被设定 35%、/strong>
每根色谱柱都有可达到最大效率或理论塔板数的固有最佳流速。如果流量减小或增大,则用非最佳分离塔板数进行分离。与液相色谱法相比,SFC 可以使用更高的流速,而分离塔板数不会大幅减少[5]、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">因此+/strong>?显示了流速对分离效率的影响、/strong>
▱/span>?. 20mL/min,右 30mL/min,改性剂 % = 35%,温 = 40℃,背压调节 =150bar,进样量 =150μL
随着流量的增加,运行时间和峰宽进一步减小。运行时间从大约 2.5 分钟缩短 2 分钟以内。根据样品的不同,温度和压力对组分的分离和保留的选择性有影响。因此, 100 bar 150 bar 以及 40 50 范围内进行了 4 次实验(?span style="text-decoration-line: underline; color: rgb(165, 210, 0); box-sizing: border-box;">?)。可以看出,温度和压力的变化对各自的分离没有明显的影响、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">因此,叠层进样时,温度控制在 40℃,背压调节器控制在 150 bar、/strong>
▱/span>?.左上 100bar 40℃,右上 150bar 40℃,左下100bar 50℃,右下 150bar 50℃。流 = 30 mL/min,改进剂 %=35%,进样量 =150μL
为了提高分离效率,增 TSO 的浓度和进样?150μL ~ 250 μL)(见?左上)。在这些条件下,基线分离仍然是可行的、span style="text-decoration-line: underline; color: rgb(165, 210, 0); box-sizing: border-box;">?(右上和下)显示了在与单次进栶span style="text-decoration-line: underline; color: rgb(165, 210, 0); box-sizing: border-box;"> 6 左上相同的实验条件下,叠层进样时间为 0.97min,即 0.97 分钟进样一次。在这种情况下,每次额外注入都节省了平衡时间,提高了产能。最终采用基于时间的方法收集馏分。每次进样的紫外信号都表明了该方法具有良好的再现性(?右上)。垂直线表示收集相应馏分的时间窗口、/p>
▱/span>?. 左上 250μL ?.1909 g TSO 6mL 甲醇溶液),右上叠层进样 TSO 的紫外信号,下最后的色谱图。流 = 30 mL/min,改进剂 %=35%,温 =40℃,背压调节?150bar,进样量 = 250μL,进样次 = 10欠/span>
6
结论
在文中,使用 Sepmatix 8x SFC 仪器进行 TSO 为分析物的手性柱筛选,将最合适的手性色谱柱,转移到 Sepiatec SFC-50 仪器进行制备、strong style="box-sizing: border-box;">每根手性柱对手性物质的反应都不同,这就是为什么在纯化过程之前必须进行筛选的原因,作为标准物质的 TSO 可以在许多不同的手性柱上分离、/span>
随后 SFC-50 上放大,并利用制备柱对等度纯化的方法进行优化、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">结果表明,改性剂的选择、改性剂在流动相中的比例和流量对分离效果有较大影响。在这些特定条件下,温度和压力的变化对分离效果的影响不大。在一般情况下,这两个参数也可以改变以优化分离条件、/strong>
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