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已认?/p>
贝克曼库尔特基于SPRI技术的AMPure XP叉/span>SPRIselect两种NGS文库纯化和片筛试剂已家喻户晓。该技术采用顺磁性的磁珠、选择性的结合特定大小的核酸,被众多主流建库试剂盒及测序专家指定选用、/span>
那么+/span>‛/span>金标凅/span>“/span>还有优化的空间吗?让原厂来给您专业的分析:单从洗脱,有哪些优化的重点、/span>
用什么洗>/span>
如上图所礹/span>:?/span>Tris or TE buffer (+/-EDTA)中,洗脱得率相比于纯水有了显著提升。耋/span>PBS溶液'/span>pH 6-8)的效果紧随其后,且PH无显著影响。这可能不/span>PBS中的盐离子的存在有关。另一方面,从稳定性(CV)上看,TrisTEPBS洗脱都优于水、/span>
加多少?
如上图所示:对比了不同加样体积及洗脱体积的影响。所有的DNA起始浓度一致,因此洗脱体积越小,产物相对浓度越髗/span>(A);但是由于磁珠也会占用一部分洗脱溶液的体积(?/span>1 µL),产物浓度越高则这部分损失越多(B);虽然小体积洗脱会得到影响核酸的得率,但是这并不是因为洗脱效率引起的:当投入量一致时,不同洗脱体积的得率无显著差弁/span>(C)、/span>
洗多久?加热吗?
如上图所示:?/span>1分钟的时候,洗脱已经进入平台期(非指数期)提示大多数核酸已经洗脱下来。不加热的情况下+/span>1分钟不/span>20分钟洗脱相比+/span>1分钟的量显著偏低'/span>p < 0.01)。从2分钟洗脱开始,无显著差异。加热至60度后,洗脱速度更快9/span>1分钟与其他时长无显著差异、/span>
小结
上述实验通过使用lambda phage DNA (49 kb),对贝克曼库尔特皃/span>SPRI技术磁珠进行测试,提示9/span>
长达49 kb的核酸片殴/span>2分钟可以被充分洗脱、/span>
使用Tris溶液可以提升洗脱效率和稳定性、/span>
不同的起始及洗脱体积对洗脱效率影响不大、/span>
但是小体积的物理限制会导致更多核酸损失于死体积、/span>