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FluorCam开放式叶绿素荧光成像系绞/span>
FluorCam开放式叶绿素荧光成像系统是一款高度灵活、应用广泛的植物生理生态研究仪器,系统采用模块化结构,有四?/span>LEDs光源版?/span>CCD镜头、支架、控制单元及FluorCam成像分析软件等组成。两寸/span>LEDs光源版提供测量光、光化学光和饱和光闪,角度和高度可调:/span>CCD镜头高度可调,且可灵活配?/span>PSI特制高灵敏度CCD镜头或高分辨率镜头,还可装配第五个光源版于镜头周边。标准配置(标准版)?*成像面积丹/span>1313 cm,大型版**成像面积辽/span>2020 cm,既可对单个叶片进行叶绿素荧光成像,还可对整株植物进行叶绿素荧光成像,广泛应用于植物光合生理生态、植物逆境胁迫生理与易感性、气孔功能、植物环境如土壤重金属污染响应与生物监测、植物抗性、作物育种等研究、/span>
应用领域:
植物光合特性和代谢紊乱筛逈/span>
生物和非生物胁迫的检浊/span>
植物抗胁迫能力或者易感性研穵/span>
气孔非均一性研穵/span>
代谢混乱研究
长势与产量评?/span>
植物——微生物交互作用研究
植物——原生动物交互作用研穵/span>
功能特点:
模块化,配置灵活,可自由安装更换光源板、自由调整光源角度和高度、自由调敳/span>CCD镜头高度,方便被测植物的处理、操作等
可自由选配不同波长LEDs光源板,如选配青色光源板用于气孔功能研究、选配紫外光源板用于多色荧光成像试验测量等
成像面积大,大型版成像面积达20500px,可对整株植物甚至多株植物(如拟南芥等小型植物)进行实验成像分析
高灵敏度CCD镜头,时间分辨率辽/span>50张每秒,快速捕捉叶绿素荧光瞬变
可进行自动重复成像测量,可设置一个实验程序(Protocols)自动循环成像测量,成像测量数据自动按时间日期存入计算机(带时间戳)
带有Kautsky诱导效应、荧光淬灭分析等各种通用实验程序'/span>protocols),测量分析参数辽/span>50多个
可选配TetraCam彩色成像模块?*成像面积20625px,用于叶片或植物形态测量分枏/span>
测量样品包括叶片、花卉、果实、植物其它组织及整株植物、藻类等
技术参数:
标准版成像面积达13325px,大型版成像面积辽/span>20500px
测量包括F0+/span>F0‘/span>+/span>Fs+/span>Fm+/span>Fm‘/span>+/span>Fp+/span>FtDn+/span>FtLn+/span>Fv+/span>NPQ_Dn+/span>NPQ_Ln+/span>Qp_Dn+/span>Qp_Ln+/span>qN+/span>QY+/span>QY_Ln+/span>PARabs+/span>Rfd筈/span>50多个叶绿素荧光参?/span>
高灵敏度CCD,时间分辨率可达每秒50张,512512像素,可精确无时滞地捕捉荧光瞬变,高速快捷分析处理;可选配高分辨率镜头(一般用亍/span>GFP等静态荧光成像)
自动测量分析功能:可预设1个实骋/span>程序,系统可自动测量储存,数据文件自动按照时间命同/span>
配置有通用叶绿素荧光成像测量实验程序(protocols),包括Fv/Fm Protocol+/span>Kautsky诱导效应Protocol,荧光淬灭分枏/span>Protocol,客户定制光响应曲线叉/span>PAR吸收成像测量筈/span>
4?/span>13325pxLED光源板(大型版为20500px),双色光源'/span>2红光+2蓝光,或2红光+2白光),双色光化学光'/span>Actinic light1咋/span>Actinic light2(/span>
标配Actinic1光强300mol(photons)/m2.s +/span>Actinic2光强2000mol(photons)/m2.s,饱和光?/span>4000mol(photons)/m2.s
光源升级9/span>Actinic1光强2000mol(photons)/m2.s +/span>Actinic2光强3000mol(photons)/m2.s,饱和光?/span>6000mol(photons)/m2.s
标配测量光为618nm红光,其它波段可选,持续时间10s‒/span>100s可调:/span>
远红先/span>735nm'/span>FAR(/span>不/span>630nm双色LEDs光源板与7位滤波轮,用于测野/span>F0‘/span>叉/span>PARabs
1对青艱/span>LEDs光源版(选配),光强3000mol(photons)/m2.s,用于气孔功能测量研穵/span>
FluorCam叶绿素荧光成像分析软件,其/span>Live(实况测试)?/span>Protocol(实验程序选择)?/span>Pre–processing(成像预处理)?/span>Result(成像分析结果)等菜協/span>
Protocol实验程序可自由编辑,用户也可利用Protocol菜单中的向导程序模版自由创建新的实验程序
成像预处理可以自动选区或手动选择不同形状、不同数量、不同位置的区域'/span>Region of interest+/span>ROI),成像分析结果包括高时间解析度荧光动态图、直方图、不同参数成像图、不吋/span>ROI的荧光参数列表等
数据分析具备‛/span>信号计算再平坆/span>“/span>模式(算数平均值)咋/span>‛/span>信号平均再计算模弎/span>“/span>,在高信噪比的情况下选用‛/span>信号计算再平坆/span>“/span>模式,在低信噪比的情况下选择‛/span>信号平均再计箖/span>“/span>模式以过滤掉噪音带来的误?/span>
给光制度9/span>静态或动态(窦式(/span>
CCD检测范围:400‒/span>1000nm,像素尺寸:8.2m8.4m
A/D 转换分辨率:12佌/span>
光谱响应9/span>540nm处量子效?*'/span>70 %),400nm咋/span>650nm处转陌/span>50%
读出噪音9/span>低于12eRMS,典垊/span>10e
满阱容量9/span>大于70?00 e (unbinned)
Bios9/span>固件可升?/span>
通讯方式9/span>USB 2.0
供电电压9/span>90‒/span>240V
典型应用9/span>
1. Chi W. et al. (2008): Plant Physiol. 147: 573-584.
拟南?/span>dg1缺陷性与野生型叶绿素荧光比较+/span>dg1补偿后差异消失,确认叶绿素荧光变化是田/span>dg1缺陷造成的、/span>
2.Miura E. et al. (2007): Plant Cell 19: 1313-1328.
产地9/span>欧洲
致电索取参考文献列?/span>
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