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【瑞士步琦】【应用】使用步琦中压制备色谱C-815高效分离纯化ω-3脂肪酷/p>

【瑞士步琦】【应用】使用步琦中压制备色谱C-815高效分离纯化ω-3脂肪酷/div>
2.jpg

使用 Pure Flash C-815

高效分离 ω-3 脂肪酷/strong>

Pure应用



1



简今/strong>

ω-3 脂肪酸是一类长链多不饱和脂肪酸,由于人体中缺乏 Δ?2 Δ?5 脱饱和酶+span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">Ω-3 脂肪酸必须通过饮食获取,并且被认为对人类健康至关重?/strong>。EPA DHA 的摄入量的增加已被科学证明在治疗和预防动脉粥样硬化、心肌梗死、炎症、关节炎、糖尿病、婴儿大脑发育和癌症方面有益。许多流行病学、观察性和临床研究强调ω-3 脂肪酸在降低血浆甘油三酯水平和预防心血管疾病方面的有效?/strong>。全球的心脏病学会建议每天服 ω-3 脂肪酸(EPA+DHA 或仅 EPA)的剂量 4 克(总EPA + DHA 超过 3 克),这代表了一种有效的降甘油三酯治疗剂。随着这一关注度的增加,对高纯 ω-3 脂肪酸的需求激增。然而长期的过度捕鱼导致主要鱼类来源急剧下降,导 ω-3 脂肪酸的价格迅速上涨。尽管如此,全世界只有少数公司有能力生产药用 ω-3 脂肪酸。因此开发一种普遍适用且成本效益高的技术,以确保高纯度 ω-3 脂肪酸的安全生产是必要的。在本研究中,使 RP-MPLC 技术来制备高纯度的 ω-3 脂肪酸乙酯,目标总含量不低于 84% EPA DHA,这是根据药典规定的。基本变量控制分离过程被评估和优化,基于纯度和回收率,包括填料材料、流动相、样品体积、样品浓度、流速和流动相组成、/p>


2



色谱柱填料对分离效果的影哌/strong>

色谱柱填料是色谱系统的“核心”,其物理化学性质,包括包装结构的均匀性(单相、多孔或非多孔)、几何形状(粒径、床面积和孔径及形状)以及所附接的配体类型,对分离效能有显著影响。为了寻找高通量、低背压、高灵敏度和高分辨率以实现高效分离的色谱柱填料,对多种键合相材料(CN、Diol、C4、C6、C8、C18 AQ-C18)在 ω-3 脂肪酸乙酯的纯化中进行了评估(见??(/p>


▱/span>?.使用不同色谱柱填料的 ω-3 脂肪酸乙酯的 RP-MPLC 色谱国/span>


?. AQ-C18 C18 RP-MPLC 纯化 EPA DHA 酯的影响、/strong>

色谱柱填斘/strong>

AQ-C18

C18

tR2 (min)

17.09±0.08

31.08±0.14

tR3 (min)

21.53±0.07

37.90±0.1

Rs1

1.43±0.02

1.27±0.03

Rs2

1.13±0.03

1.02±0.03


注意9/strong>tR2 表示 EPA 的保留时间;tR3 表示 DHA 的保留时间;RS1 表示 EPA 与其前杂质(组分A)的分离度;RS2 表示 DHA 与其后杂质(组分D)的分离度。同一组中的不同字母表示显著差?nbsp;(p<0.05) 。以下表格同样适用此注释、/p>


C18 AQ-C18 填充材料的洗脱曲线显示出 EPA DHA 的明显目标峰,并且与相邻的杂质峰有良好的分离。AQ-C18 显示了较早的峰出现时间,较短的纯化时间和较低的溶剂消耗, C18 相比,这展示了更优越的分离效率。C18 AQ-C18 都是非极性反相色谱固定相,带有十八烷基碳链的硅胶。然而,AQ-C18 经历硅羟基的极性末端封口,减少了表面的残留硅醇,从而增强了 ω-3 脂肪酸乙酯的分离效果(见?)。因此,AQ-C18 被选为后续实验的固定相、/p>


▱/span>?. RP-MPLC 固定?A) C18 ?B) AQ-C18 的结构差弁/span>


3



流动相对分离效果的影哌/strong>

选择合适的流动相对于提高分离效率起着重要的辅助作用。低粘度、低沸点和低成本的溶剂被优先考虑。在??中,乙醇和乙腈在 ω-3 脂肪酸中分离出杂质时效果不佳,而甲醇则成功了。尽管甲醇的粘度较高,但其较低的沸点使得从产品中除去甲醇,比乙腈和乙醇更容易、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">因此甲醇被选为首选的流动相、/strong>


▱/span>?. 不同流动相下 ω-3 脂肪酸乙酯的 RP-MPLC 色谱国/span>


?. 不同流动相对 RP-MPLC 纯化 EPA DHA 乙酯的影响、/strong>

流动盷/strong>

乙醇

乙腈

甲醇

tR2 (min)

6.29 ± 0.08

13.95 ± 0.1

17.08 ± 0.06

tR3 (min)

7.14 ± 0.04

15.81 ± 0.08

21.54 ± 0.08

Rs1

0

0

1.42 ± 0.02

Rs2

0

1.32 ± 0.02

1.27 ± 0.03


流动相中有机溶剂的比例会改变其极性,从而影响样品组分在固定相中的分配系数,并影响分离效率。增加甲醇比例会推迟峰出现时间,使峰形变宽,并减少脂肪酸乙酯 EPA DHA 的保留时间、分辨率以及纯度(见??)。这是因为增加流动相的极性已被发现能够通过延迟非极性FAEE在柱中的保留时间来提高分离效率。当甲醇比例 86% 90% 时,ω-3 脂肪酸的纯度逐渐下降;同时回收率提高。当甲醇比例达到92%时,EPA DHA 的脂肪酸乙酯纯度降至 83.39%,这不符合国家药典标准。甲醇比例超 90% 不利于制备高纯度 ω-3 脂肪酸、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">因此选择 90% 的甲醇溶液作为流动相、/strong>


▱/span>?. 不同甲醇浓度 RP-MPLC ω-3 脂肪酸乙酯色谱图


?. 不同甲醇浓度 RP-MPLC 纯化 EPA DHA 乙酯的影哌/strong>

甲醇:氳/strong>

86:14

88:12

90:10

92:8

EPA-EE/DHA-EE纯度 (%)

87.17 ± 0.15

86.32 ± 0.10

85.27 ± 0.15

83.39 ± 0.14

EPA-EE/DHA-EE回收 (%)

54.51 ± 0.16

65.24 ± 0.12

74.30 ± 0.11

53.28 ± 0.01

tR2(min)

22.81 ± 0.05

18.37 ± 0.07

11.87 ± 0.05

9.67 ± 0.1

tR3(min)

30.48 ± 0.08

24.26 ± 0.06

15.07 ± 0.04

12.02 ± 0.07

Rs1

1.64 ± 0.04

1.50 ± 0.02

1.22 ± 0.04

1.05 ± 0.03

Rs2

1.41 ± 0.03

1.26 ± 0.03

1.02 ± 0.02

0.84 ± 0.02


4



上样体积对分离效果的影响

根据色谱制备的非线性理论,增加样品体积可以提高色谱的处理能力,提高产品回收率,并提高生产效率。如?所示,随着负载体积的增长,保留时间延迟,峰形变宽,分辨率降低,纯化时间增加。这可能是因为更多的杂质 AQ-C18 填料上吸附,影响了主峰和杂质峰的分离,从而降低了目标物质的纯度。当样品体积 0.6mL 时,EPA DHA 峰的总乙酯回收率最?83.57%)。为了在实现更好的分离效果的同时最大化负载体积+span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">选择 0.6mL 的样品负载量,相当于色谱 1.25% 的柱体积、/strong>


▱/span>?. 不同上样体积 RP-MPLC ω-3 脂肪酸乙酯色谱图


?. 不同上样体积 RP-MPLC 纯化 EPA DHA 乙酯的影哌/strong>

上样体积mL

0.4

0.5

0.6

0.7

EPA-EE/DHA-EE纯度 (%)

87.57 ± 0.30

86.75 ± 0.08

86.67 ± 0.24

83.15 ± 0.30

EPA-EE/DHA-EE回收 (%)

58.44 ± 0.13

65.43 ± 0.21

83.57 ± 0.22

63.59 ± 0.36

tR2(min)

17.10 ± 0.04

17.25 ± 0.05

17.40 ± 0.05

17.51 ± 0.04

tR3(min)

21.47 ± 0.04

21.80 ± 0.03

22.07 ± 0.07

22.30 ± 0.06

Rs1

1.43 ± 0.02

1.32 ± 0.03

1.27 ± 0.02

1.06 ± 0.02

Rs2

1.07 ± 0.02

1.02 ± 0.01

1.02 ± 0.02

0.96 ± 0.02


5



样品浓度对分离效果的影响

在工业生产中,增加样品的浓度可以增强色谱处理能力,而降低浓度有助于促进分析物向色谱填料材料的分配和吸附过程,从而提高目标物质与杂质的分离度。然而这种改进是以相应的回收率降低为代价、span style="text-decoration-line: underline; box-sizing: border-box;">?展示了不同浓度的鱼油乙酯与甲醇混合的 RP-MPLC 色谱曲线,并?。随着鱼油乙酯浓度的增加,EPA DHA 乙酯的纯度下降,而回收率、保留时间和分辨率表现出增加。相反,使用纯鱼油注射降低了 EPA DHA 乙酯的分离因子,实现 1.23 的前杂质分离因子 1.10 的后杂质分离因子,纯度为 85.75%。EPA DHA 乙酯的回收率随着样品的浓度稳步增加,达到纯鱼油时的峰 74.62%、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">为了最大化生产效率,选择了纯鱼油乙酯、/strong>


▱/span>?. 不同纯度样品 RP-MPLC ω-3 脂肪酸乙酯色谱图


?. 不同浓度 RP-MPLC 纯化 EPA DHA 乙酯的影哌/strong>

样品浓度g/mL

0.25

0.5

1

Pure

EPA-EE/DHA-EE纯度 (%)

87.19 ± 0.19

86.63 ± 0.28

86.11 ± 0.11

85.75 ± 0.15

EPA-EE/DHA-EE回收 (%)

50.47 ± 0.08

58.65 ± 0.07

62.21 ± 0.08

74.62 ± 0.05

tR2(min)

15.86 ± 0.03

17.51 ± 0.04

17.61 ± 0.03

17.72 ± 0.02

tR3(min)

18.07 ± 0.06

20.69 ± 0.06

21.47 ± 0.04

21.92 ± 0.03

Rs1

1.38 ± 0.03

1.35 ± 0.02

1.29 ± 0.02

1.23 ± 0.04

Rs2

1.31 ± 0.04

1.27 ± 0.03

1.13 ± 0.02

1.10 ± 0.03


6



流速对分离效果的影哌/strong>

在液相色谱系统中,增加流速可以缩短分析物的洗脱时间,但可能会降低色谱分析的稳定性。随着流速的增加,分析物的洗脱时间提前,峰形变得更加紧凑,导致乙 EPA DHA 的峰与周围杂质峰的距离更近(?)。随着流速的加快,EPA DHA 乙酯的洗脱时间持续缩短,导致保留时间和分辨率降低,从而纯度下降(?)。此外,EPA DHA 乙酯的回收率也随着流速的增加而持续下降,这可能是因为过高的流速可能会阻碍目标化合物的吸附到固定相、span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">为了优化分离效率同时减少时间和溶剂的使用,选择 30mL/min 的流速、/strong>


▱/span>?. 不同流速下 RP-MPLC ω-3 脂肪酸乙酯色谱图


?. 不同流速对 RP-MPLC 纯化 EPA DHA 乙酯的影哌/strong>

流速mL/min

20.00

25.00

30.00

35.00

EPA-EE/DHA-EE纯度 (%)

86.17 ± 0.15

86.01 ± 0.14

85.27 ± 0.15

84.16 ± 0.83

EPA-EE/DHA-EE回收 (%)

82.86 ± 0.18

76.35 ± 0.01

73.82 ± 0.16

58.94 ± 0.14

tR2(min)

17.33 ± 0.06

14.08 ± 0.08

11.87 ± 0.05

9.62 ± 0.09

tR3(min)

20.60 ± 0.07

17.82 ± 0.08

15.07 ± 0.06

12.09 ± 0.08

Rs1

1.27 ± 0.03

1.26 ± 0.03

1.23 ± 0.01

1.14 ± 0.02

Rs2

1.28 ± 0.04

1.06 ± 0.02

1.01 ± 0.02

0.87 ± 0.03


7



ω-3 脂肪酸乙酯纯化后的脂肪酸分析

含有相当于色谱柱体积 1.25% 的鱼油乙酯被引入装有AQ-C18 填料 RP-MPLC 柱(粒径 20-40 微米,孔?00Å,表面积 320?40m2/g),并用 90:10(体积比)的甲醇-水溶液作为等度流洗脱剂,流速为30mL/min,操作压力为 1-4bar,步 Pure Flash C-815 中压制备色谱。在最佳纯化条件下,鱼油乙酯的 RP-MPLC 色谱图如?所示。收集了 B C 两个馏分,并在减压下浓缩,随后通过 GC-MS 进行鉴定。总共鉴定?6种脂肪酸,以 2.39% 的单不饱和脂肪酸(SFA)?.14% 的多不饱和脂肪酸(MUFA)和94.47% 的饱和脂肪酸(PUFA)的形式存在(图9和表7)。与初始样品相比,去除了 SFA C14:0、C15:0 C19:0;MUFA C24:1n9;以及PUFA C22:5n3、C20:3n6和C22:5n6。?3 PUFA 的比例从 78.59%上升 90.34%+span style="color: rgb(86, 172, 221); box-sizing: border-box;">主要成分 EPA DHA,分别占 57.13% 28.14%,总计 85.27%。因此,通过 AQ-C18 RP-MPLC 纯化 ω-3 脂肪酸乙酯符合?020 年药典》中“乙基多烯酸”的标准,该标准规定 EPA DHA 的含量至少为 84%、/strong>


▱/span>?. 在最佳纯化条件下鱼油乙酯 RP-MPLC 色谱国/span>


▱/span>?. ω-3 脂肪酸乙酯的纯化气相色谱国/span>


?. 纯化 ω-3 脂肪酸乙酯的脂肪酸组戏/strong>

3.png


8



实验结论

通过使用 AQ-C18 色谱柱和步琦 Pure Flash C-815 中压制备色谱,获得了 EPA DHA 含量 85.27%,回收率高达 74.30% ω-3 脂肪酸乙酯、/strong>鱼油样品注射量为柱体积的 1.25%;以(90:10,v:v)的甲?水溶液作为流动相,以 30mL/min 的流速进行等速洗脱,操作压力 1-4bar。与 RP-HPLC 相比,虽然两种方法生产的 EPA DHA 乙酯纯度均符合国家药典标准,RP-MPLC 允许更大样品的装载量、更高的流速和更低的系统压力,从而缩短了纯化时间、提高了生产效率并降低了生产成本、/strong>


4.png

▱/span>Pure Flash C-815 中压制备色谱系统


9



参考文?/strong>

  1. Sang, M.; Pan, N.; Wu, J.; Chen, X.; Cai, S.; Fang, H.; Xiao, M.; Jiang, X.; Liu, Z. Reversed-Phase Medium-Pressure Liquid Chromatography Purification of Ω-3 Fatty Acid Ethyl Esters Using AQ-C18. Mar. Drugs 2024, 22, 285.




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